بهبود زنده‌مانی، استقرار و ویژگی‌های رویشی نهال‌های ارس (Juniperus excelsa) با تلقیح قارچ‌های میکوریزی بومی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشیار موسسه تحقیقات جنگل ها و مراتع

2 کارشناس پژوهش، مدیر فنی آزمایشگاه اکوفیزیولوژی بخش تحقیقات جنگل- موسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور

3 کارشناسی ارشد پزوهشی موسسه تحقیقات جنگل ها و مراتع کشور

4 جنگلداری و اقتصاد جنگل

چکیده

یکی از راهکارهای افزایش زنده‌مانی و رشد نهال‌های جنگلی در احیای رویشگاه‌های تخریب‌یافته، شناسایی قارچ‌های میکوریزی همزیست با ریشۀ گیاهان آن رویشگاه و سپس تکثیر و تلقیح آنها برای توانمندسازی نهال‌های تولیدی است. این پژوهش به‌منظور شناخت قارچ‌های آربسکولار همزیست با درختان ارس (Juniperus excelsa) رویشگاه چهارطاق (استان چهارمحال و بختیاری) و ارزیابی تأثیر این قارچ‌ها در افزایش زنده‌مانی و مؤلفه‌های رویشی نهال‌های میکوریزی ارس در سه سال متوالی اجرا شد. از ریشه و خاک اطراف ریزوسفر نه درخت ارس به‌طور کاملاً تصادفی نمونه‌برداری و در شرایط سرد (در یخدان) به آزمایشگاه منتقل شد. پس از شناسایی پنج گونه قارچ همزیست، مایۀ تلقیح تولیدشده با گیاه ذرت در اختیار بذرهای جوانه‌زدۀ ارس قرار گرفت. براساس نتایج، تأثیر همزیستی قارچ‌های آربسکولار شناسایی و تلقیح‌شده شامل Ambispora gerdemannii، Funneliformis mosseae، Glomus hoi، Septoglomus constrictumو Rhizophagus intraradices و اثر سن نهال بر طول ریشه، ارتفاع اندام هوایی، قطر یقه و زنده‌مانی نهال‌ها مثبت بود. در پایان سال سوم، در حدود 50 درصد از نهال‌های شاهد از بین رفتند، اما این تلفات برای نهال‌های تلقیح‌شده بین 17 تا 40 درصد بود. قارچ‌های A. gerdemannii R. intraradices بیشترین تأثیر مثبت را در زنده‌مانی نهال‌ها داشتند. متغیرهای رویشی تحت تأثیر قارچ R. intraradices از بزرگ‌ترین اندازه برخوردار بودند. یافته‌های این تحقیق نشان داد که توانمندسازی نهال‌ها توسط قارچ‌های همزیست، راهکاری مناسب برای افزایش زنده‌مانی و رویش نهال‌ها در برنامۀ تولید نهال خواهد بود. تحقیق با استفاده از قارچ‌های همزیست برای بهبود رشد و استقرار نهال‌ها در رویشگاه‌های آسیب‌دیده که خاک شرایط تغذیه‌ای مناسبی ندارد توصیه می‌شود

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Improving the survival, establishment and growth characteristics of Juniperus excelsa seedlings by inoculation of native mycorrhizal fungi

نویسندگان [English]

  • Mohammad Matinizadeh 1
  • Elham Nouri 2
  • Tahere Alizadeh 3
  • Anooshirvan Shirvany 4
1 Assoc., Prof., Forest Research Division, Research Institute of Forests and Rangelands
2 Research Expert Research Institute of Forests and Rangelands Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO) Tehran, Iran
3 MSc, Research Institute of Forests and Rangelands, I. R. Iran
4 Associate Professor- Department of Forestry and Forest Economics- Faculty of Natural Resources- University of Tehran
چکیده [English]

One of the strategies to promote the survival and growth of forest seedlings in rehabilitating damaged habitats is to identify arbuscular mycorrhizal fungi that symbiosis with the roots of the plants in that habitat and then propagate and inoculate them to enable the productive seedlings. The aim of this study was to identify arbuscular fungi coexisting Greek juniper (Juniperus excelsa M.Bieb.) of Chahartagh habitat (Chaharmahal and Bakhtiari province), and to evaluate the role of these fungi in increasing the viability and vegetative components of mycorrhizal juniper seedlings in three consecutive years. The roots and soil around the rhizosphere of nine juniper trees were sampled completely randomly and transferred to the laboratory in cold conditions (in the icebox). After identifying five species of symbiotic fungi, using identification keys in authoritative articles, the inoculum produced with maize was given to germinated juniper seeds, after 4 months. According to the results, the symbiotic effect of identified and inoculated arbuscular fungi including Ambispora gerdemannii, Funneliformis mosseae , Glomus hoi, Septoglomus constrictum, and Rhizophagus intraradices was positive on root length, shoot height, root collar diameter, and seedling survival. At the end of the third year, about 50% of the control seedlings were destroyed, however, the losses for inoculated seedlings ranged from 17 to 40%. A. gerdemannii and R. intraradices had the most positive effect on plant survival. The growth factors under R. intraradices treatment had the highest amount.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Arbuscular fungi
  • Morphological identification
  • Mycorrhizal seedling
  • Root colonization

مراجع

[1]. Kasaian, J., Behravan, J., Hassany, M., Emami, S. A., Shahriari, F., and Khayyat, M. H. (2011). Molecular characterization and RAPD analysis of Juniperus species from Iran. Genetics and Molecular Research: GMR, 10(2), 1069–1074.
[2]. Adams, R. P., and Pandey, R. N. (2003). Analysis of Juniperus communis and its varieties based on DNA fingerprinting. Biochemical Systematics and Ecology, 31(11), 1271–1278.
[3]. Khoshnevis, M., Teimouri, M., Sadegzadeh Hallaj, M., Matinizadeh, M., and Shirvany, A. (2019). The effect of vegetative form and shading on planting success of Greek Juniper (Juniperus excelsa M. B.). Iranian Journal of Forest and Poplar Research, 27(2), 125–134.
[4]. Ali Ahmad Korori, S., and Khoshnevis, M. (2000). Ecological and Environmental Studies of Juniperus habitats in Iran. Research Institute of Forest and Rangelands, 208 p.
[5]. Khosrojerdi, A., Droudy, H., Ahmadi, A., Saghafi Khadem, F., and Nam Doost, I. (2008). Investigation of the effect of native trees on the establishment of Juniperus excelsa seedlings in the forests of Hezar Masjed. Research and Construction (Natural Resources), 21, 219–227.
[6]. Moradi, M., Shirvany, A., Matinizadeh, M., Etemad, V., Naji, H. R., Abdul-Hamid, H., and Sayah, S. (2015). Arbuscular mycorrhizal fungal symbiosis with Sorbus torminalis does not vary with soil nutrients and enzyme activities across different sites. IForest, 8(3), 308–313.
[7]. Smith, S. E., and Read, D. j. (2008). Mycorrhizal symbiosis. Academic Press, third edit, p. 787
[8]. Allen, M. F. (2011). Linking water and nutrients through the vadose zone: a fungal interface between the soil and plant systems. Journal of Arid Land, 3(3), 155–163.
[9]. Walkley, A., and Black, I. A. (1934). An examination of Degtjareff method for determining soil organic matter, and proposed modification of the chromic acid tritation method. Soil Science, 37, 29–38.
[10]. Bremner, J. M., and Mulvaney, C. S. (1982). Nitrogen-total. In A. L. Page, R. H. Miller, and D. R. Keeney (eds.), Methods of Soil Analysis, Part 2. Agronomy, 9, 595–624.
[11]. Olsen, S. R., and Summers, L. E. (1982). Phosphorus. In Page. A. L., Keeney, D.R. (Eds.), Methods of soil analysis. Madison, WI: Soil Science Society of America, Inc, 421–422.
[12]. Warncke, D., and Brown, J. (1998). Potassium and Other Basic Cations. In: Brown, J.R., Ed., Recommended Chemical Soil Test Procedures for the North Central Region. Missouri Agricultural Experiment Station SB 1001, University of Missouri, Columbia, 221, 31–33.
[13]. Gerdemann, J. W., and Nicolson, T. H. (1963). Spores of mycorrhizal Endogone species extracted from soil by wet sieving and decanting. Transactions of the British Mycological Society, 46(2), 235–244.
[14]. Redecker, D., Schüßler, A., Stockinger, H., Stürmer, S. L., Morton, J. B., and Walker, C. (2013). An evidence-based consensus for the classification of arbuscular mycorrhizal fungi (Glomeromycota). Mycorrhiza, 23(7), 515–531.
[15]. Mcgonigles, T. P., Millers, M. H., Evans, D. G., Fairchild, G. L., and Swan, J. A. (1990). A new method which gives an objective measure of colonization of roots by vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi. New Phytol, 115.
[16]. Matinizadeh, M., Ali, S., Korori, A., Khoshnevis, M., Teimouri, M., Karamdost, B., and Bonyad, A. (2005). Identification and abundance of mycorrhizal fungi symbiosis with Juniperus excelsa. Iranian Journal of Forest and Poplar Research, 13(4), 518.
[17]. Nouri, E., Moshki, A., Matinizadeh, M., Zolfaghari, A. A., and Rajaei, S. (2020). Variations in the diversity of the Arbuscular mycorrhizal fungi and its symbiosis as affected by different levels of grazing in rangelands. Iranian Journal of Range and Desert Research , 27(4), 619–628.
[18]. Noori, A., Manochehri Kalantari, K., Sharifi, M., Naseri, F., and Tahernezhad, A. (2009). Mycorrhizal status of some dominance plants in Kerman. Environmental Sciences, 6 ( 2),1–10.
[19]. Essahibi, A., Benhiba, L., Ait Babram, M., Ghoulam, C., and Qaddoury, A. (2018). Influence of arbuscular mycorrhizal fungi on the functional mechanisms associated with drought tolerance in carob (Ceratonia siliqua L.). Trees, 32(1), 87–97.
[20]. Mirzaei, J., Akbarinia, M., Mohamadi Goltapeh, E., Sharifi, M., and Rezaei Danesh, Y. (2011). Effect of arbuscular mycorrhizae fungi on morphological and physiological characteristics of Pistacia khinjuk under drought stress. Iranian Journal of Forest and Poplar, 19(244), 291–300.
[21]. Schüßler, A., Krüger, C., and Urgiles, N. (2016). Phylogenetically diverse AM fungi from Ecuador strongly improve seedling growth of native potential crop trees. Mycorrhiza, 26(3), 199–207.
 
نشریه جنگل و فرآورده های چوب
دوره 74، شماره 4
بهمن 1400
صفحه 421-432

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار